1 of 10

ОДЕСЬКИЙ НАЦІОНАЛЬНИЙ УНІВЕРСИТЕТ імені І. І. МЕЧНИКОВА�Біологічний факультет�Кафедра мікробіології, вірусології та біотехнології

��� Синтез сидерофорів у моно- та ко-культурах бактерій Чорного моря

С. Мартиненко, магістр I курсу, М. Фіногенова, аспірант

Науковий керівник: д. б. н., професор

Філіпова Т.О.

Одеса – 2024

2 of 10

Рис. 3. Сфери застосування сидерофорів

Актуальність теми дослідження

Рис.1. Основні класи сидерофорів [Kramer et al., 2020].

 

Рис. 2. Загальні шляхи транспорту заліза в клітину, опосередковані сидерофорами [Krewulak et al., 2008].

 

3 of 10

Мета роботи: визначення ефективності синтезу сидерофорів морськими бактеріями Чорного моря у моно- та ко-культурах

Завдання:

 

  1. Дослідити синтез сидерофорів монокультурами бактерій родів Bacillus та Pseudomonas, виділених з мідій Чорного моря.
  2. Дослідити синтез сидерофорів ко-культурами бактерій родів Bacillus та Pseudomonas, виділених з мідій Чорного моря.

Об’єкт дослідження – біотехнологія одержання сидерофорів морських мікроорганізмів.

Предмет дослідження – синтез сидерофорів моно- та ко-культурами, ізольованими з поверхні мідій Одеської затоки Чорного моря бактерій родів Bacillus та Pseudomonas.

4 of 10

Методи та матеріали дослідження

В роботі використовувались загалом шість штамів бактерій. П’ять були виділені з Mytilus galloprovincialis і один був референтним:

Pseudomonas аeruginosa: М1, М3, М4, РА01.

Bacillus subtilis: МС3.

Bacillus atrophoeus: МН4.

Ці штами бактерій проходили монокультивування та ко-культивування (Табл. 1)

Варіант

ко-культури

Скорочене

позначення

Варіант

ко-культури

Скорочене

позначення

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa М1

 

MC3+M1

В. atrophoeus МН4 +

P. aeruginosa М1

MH4+M1

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa М3

 

MC3+M3

В. atrophoeus МН4 +

P. aeruginosa М3

MH4+M3

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa М4

 

MC3+M4

В. atrophoeus МН4 +

P. aeruginosa М4

MH4+M4

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa РА01

 

MC3+M4

В. atrophoeus МН4 +

P. aeruginosa РА01

MH4+M4

Середовищем для культивування бактерій було LB, яке складається з 15 г пептону, 10 г дріжджового екстракту, 5 г NaCl та 1 л морської води.

Культивування відбувалось в конічних колбах, що у випадку монокультивування містили 95 мл LB та 5 мл суспензії добової культури бактерій (OD = 0,2 при 540 нм). У випадку ко-культивування одна колба містила 95 мл LB, 2,5 мл суспензії одних бактерій, 2,5 мл суспензії інших бактерій.

Культивування проводилось при 30 °С протягом 72 годин з перемішуванням 150 об/хв.

Таблиця 1

Схема ко-культивування обраних бактерій

5 of 10

Методи та матеріали дослідження

Отримана культуральна рідина після культивування проходила центрифугування протягом 20 хв при 3000 об/хв з метою отримання супернатанту.

Для визанчення вмісту сидерофрів використали CAS метод:

FeDye + L Dye + FeL,

де L – ліганд (сидерофор), Dye – барвник (хромазурол).

Для цього методу готувався спеціальний розчин, що складався з 6 мл

10 мМ HDTMA, 1,5 мл розчину хлориду заліза (ІІІ) (1 мМ FeCl×6H2O у 10 мМ HCl),

7,5 мл 2 мМ хромазуролу S, 50 мл dH2О та буферу (4 г піперазину, 10 мл dH2О,

6,5 мл 10 М HCl, 5 мл 4 мМ сульфосаліцилової кислоти). Кінцевий об’єм розчину

доводився до 100 мл.

Кількісний аналіз проводився в спектрофотометрі SmartSpec Plus (Bio-Rad, Hungary)

при 630 нм. Для цього до 96-лункового планшету в одну лунку вносили 100 мкл CAS реагенту та 100 мкл супернатанту. Чекали 1 годину й вимірювали оптичну густину розчинів. Для контрольної проби використали замість супернатанту 100 мкл чистого LB.

Вміст сидерофорів виражали в одиницях сидерофорів (SU, %), які розраховували за формулою:

SU (%) = [(Ar - As)/ Ar] ×100,

де Ar – адсорбція контрольної проби (CAS + середовище LB), As – адсорбція дослідної проби (CAS + екстракт).

Статистичний аналіз проводили в Excel. Він включав в себе вирахування Х¯, SХ¯ та t-критерію.

Рис. 1. Метод CAS агару [Schwyn, 1987].

6 of 10

Результати дослідження

 

Мікроорганізм

Вміст

сидерофорів, SU, %

 

Мікроорганізм

Вміст

сидерофорів, SU, %

P. aeruginosa М1

65 ± 4

B. subtilis МС3

31 ± 2

P. aeruginosa М3

36 ± 3

В. atrophoeus МН4

21 ± 1

P. aeruginosa М4

57 ± 5

 

 

P. aeruginosa РА01

41 ± 3

 

 

Варіант ко-культури

Вміст

сидерофорів, SU, %

Варіант ко-культури

Вміст

сидерофорів, SU, %

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa М1

81 ± 6

В. atrophoeus МН4

+ P. aeruginosa М1

70 ± 5

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa М3

54 ± 4

В. atrophoeus МН4

+ P. aeruginosa М3

41 ± 4

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa М4

76 ± 5

В. atrophoeus МН4

+ P. aeruginosa М4

63 ± 6

B. subtilis МС3 +

P. aeruginosa РА01

52 ± 4

В. atrophoeus МН4

+ P. aeruginosa М4

49 ± 5

Таблиця 1

Вміст сидерофорів у монокультурах досліджуваних бактерій

Таблиця 2

Вміст сидерофорів у ко-культурах досліджуваних бактерій

7 of 10

Результати дослідження

Рис. 2. Порівняння реального вмісту сидерофорів у ко-культурах B. subtilis МС3 з різними штамами P. аeruginosa з очікуваним.

Примітка: * - різниця достовірна у порівнянні з очікуваними даними

8 of 10

Результати дослідження

Рис. 3. Порівняння реального вмісту сидерофорів у ко-культурах B. atrophoeus МН4 з різними штамами P. аeruginosa з очікуваним

Примітка: * - різниця достовірна у порівнянні з очікуваними даними

9 of 10

    • Встановлено, що у монокультурах штами Pseudomonas синтезують у 1,7-3,1 рази більше сидерофорів ніж штами Bacillus.
    • Показано, що вміст сидерофорів у ко-культурах є більшим у порівнянні з монокультурами. Найбільш ефективними виявилися консорціуми (B. subtilis МС3 + P. aeruginosa М1) та (B. subtilis МС3 + P. aeruginosa М4).
    • Встановлено, що реальний вміст сидерофорів у ко-культурах значно перевищує розрахунковий: на 30-40 %.

Висновки

10 of 10

Дякую за увагу!