TOMA DE MUESTRAS PARA ESTUDIOS MICROBIOLÓGICOS

Dr. Armando Guevara P.

Complejo Hospitalario “Ruiz y Páez”

Unidad de Infectología y Microbiología Médica

PROPÓSITO DEL LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA

• Aislamiento del agente causal.
• Identificación del microorganismo.
• Susceptibilidad a determinados antimicrobianos.

CONDICIONES PARA REALIZAR UN ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO

• Oportuna.
• Antes de usar antimicrobianos
• Representativa del proceso infeccioso.
• Material a usar debe ser estéril.
• Cantidad suficiente para.....
• Usar medios de transporte adecuados
• Envío rápido al laboratorio

SOLICITUD DE EXÁMEN MICROBIOLÓGICO

No. de muestra ___________

No. de historia ____________ Servicio _________________ Fecha __________________

​

Complejo Hospitalario “Ruiz y Páez”

Ciudad Bolívar -Venezuela

Nombre:_____________________________ Edad: _____ Sexo: _____

Telf: _________ Ocupación: __________ Medico solicitante: ______

Dirección Actual:_____________________________________________

Dx. presuntivo: ______________________________________________

Tto. anterior y/o actual: ________________________________________

Antecedentes epidemiológicos: _________________________________

Datos Clinicos Breves:_________________________________________

Tipo de Muestra: _____________________________________________

Tipo de Examen Solicitado:

RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA

Por hisopado

Por punción - aspiración

Por aspiración con sonda

En envases

Muestras de lesiones cerradas�(obtenidas por punción)

• Líquidos naturalmente estériles
• Secreción de:

Abscesos cerrados

Ganglios linfáticos fluctuantes

Nódulos fluctuantes

• Erisipela
• Celulitis no abscedada
• Otras

RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA�(muestras por punción)

• Preparación del sitio

Solución yodada 1 minuto

Alcohol al 70% 1 minuto

Paciente alérgico al yodo:

Alcohol al 70% 2 ó 3 veces

RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA�(muestras por punción)

• Realizar la punción a través de piel sana

​

• En celulitis y erisipela:

Si no se obtiene muestra inyectar 0,5 a 1 ml de solución fisiológica y luego aspirar

​

• Muestras de líquido articular:

usar jeringa heparinizada

Muestras de lesiones abiertas

Infecciones agudas

• Infección de herida quirúrgica
• Infección de herida traumática
• Infección de quemaduras
• Infección de mordeduras

​

Infecciones crónicas

• Úlceras de decúbito o por presión
• Úlceras vasculares
• Infección de pie diabético

​

Muestras de lesiones abiertas

Preparación de área:

• Eliminar medicamentos tópicos
• Eliminar tejido necrótico y desvitalizado
• Lavar bien con solución fisiológica
• Tomar muestra de tejidos viables infectados

Muestras de lesiones abiertas

Toma de muestra para infección aguda:

Con Hisopo

• Frotar con hisopo área de 1 cm²
• Evitar sangrado
• Heridas secas: humedecer hisopo con Sol. Fis.

Biopsia de tejido

• Debe tomarse del fondo de la lesión

Secreción purulenta

• aspirar con jeringa de parte mas profunda de herida

Muestras de lesiones abiertas

Toma de muestra para infección aguda:

(Infecciones de quemaduras)

Con Hisopo

• Frotar con hisopo área de 1 cm²
• Heridas secas: humedecer hisopo con Sol. Fis.

Biopsia

• Con “Punch”
• Insicional

Limpiar superficie de quemadura con alcohol al 70%

Realizar 2 incisiones paralelas de 1 ó 2 cm. de longitud, separadas por 1,5 cm.

Obtener muestra profunda de tejido viable con bisturí y pinza estéril

Muestras de lesiones abiertas

Toma de muestra para infección crónica:

(Úlceras de decúbito o por presión y vasculares)

Aspiración percutánea

• A través de piel sana periulceral
• En zona de ulcera con tejido de granulación o ausencia de esfacelos
• Punción–aspiración manteniendo jeringa inclinada 45º aprox. hasta llegar a pared de lesión
• En infecciones no supuradas inyectar Sol. Fis.

Biopsia de tejido

• Debe tomarse de zonas con signos de infección

Con Hisopo

• Frotar con hisopo áreas sugestivas de infección
• Heridas secas: humedecer hisopo con Sol. Fis.

​

Muestras de lesiones abiertas

Toma de muestra para infección crónica:

(Infecciones de pie diabético)

Biopsia de tejido

• Debe tomarse del fondo de la lesión

Secreción purulenta

• aspirar con jeringa de parte mas profunda de herida

​

No se recomienda uso de hisopos

​

TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN

Muestras obtenidas por punción:

• Enviar en jeringa o tubo estéril

Muestras obtenidas con hisopos:

• Colocar en medio de transporte
• Temperatura ambiente

Todas deben ser procesadas inmediatamente , pero......

No invente. Si extrajo la muestra con jeringa, envíela al laboratorio en la misma jeringa

TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN

En casos excepcionales

• Colocar secreciones o LCR en caldo BHI (frascos de hemocultivo)
• LCR 1 ml Frasco pequeño
• Otros 10 ml Frasco grande
• Mantener a temp. ambiente o en estufa

No use tubos con

tapa roja

TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN

Biopsias:

• Colocar en envase estéril con gotas de solución fisiológica
• Enviar inmediatamente al laboratorio

Osteomielitis

• Limpieza de piel y/o tejidos blandos subyacentes a la lesión.

​

• Tomar muestra por punción-aspiración, biopsia con trocar

​

Los microorganismos recuperados de muestras

de trayectos fistulosos no representan la verdadera

etiología de la osteomielitis

ORINA

Toma de la muestra

• Orina del chorro medio

(micción espontánea)

• Sondaje vesical
• Punción suprapúbica

​

ORINA

Orina del chorro medio

• Envase estéril con tapa de rosca
• Primera orina de la mañana
• Lavar genitales con agua y jabon. No secarse.
• Desechar el primer chorro de orina sin parar la miccion.
• Mujer: separar labios.
• Evitar contacto con la piel.

ORINA

Pacientes que no controlan esfinteres

• Bolsa recolectora estéril
• Lavar genitales con agua y jabon.
• Cambiar cada hora

​

Pacientes con sonda uretral

• Cambiar sonda
• Tomar orina del extremo libre o pinzar sonda por

2 horas y luego aspirar con jeringa y aguja

​

ORINA

Punción suprapúbica

• Jeringa y aguja
• Extracción directa de vejiga

​

​

Conservación y transporte

• Enviar inmediatamente al laboratorio
• Refrigerar la orina hasta llevar al laboratorio.
• Llevar al laboratorio en envase con hielo

HEMOCULTIVO

Indicaciones:

• Fiebre de origen desconocido
• Síndrome febril agudo
• Endocarditis bacteriana
• Sepsis

HEMOCULTIVO

Cuando tomar las muestras

• Antes de iniciar antibióticoterapia
• Antes de la próxima dosis de antibiótico
• Antes del pico febril

HEMOCULTIVO

Número de muestras

Por lo menos 1 serie (2 ó 3 frascos)

Cantidad de sangre

10 ml de sangre c/u

Intervalo entre frascos

Cada muestra debe tomarse con 40 minutos de intervalo

​

​

​

HEMOCULTIVO

¿Por qué 10 ml de sangre?

• Mientras más sangre, más posibilidad de aislamiento. Relación 1:10

¿Por qué con 40 minutos de diferencia?

• Para diferenciar sepsis de bacteriemias intermitentes

PUNTA DE CATETER

• Sólo para catéteres vasculares, derivación ventricular, cateter bilumen.
• NO PARA SONDA DE FOLEY
• Enviar sólo 5 cm distales
• Colocar en tubo estéril seco con tapa (pedirlo al laboratorio)

No use tubos con

tapa roja

EXUDADO FARINGEO

Preparación del paciente

• Sin cepillado dental
• En ayunas

​

Transporte y conservación

• Colocar en medio de transporte
• Temperatura ambiente

ESPUTO

Investigar dos tipos de enfermedades:

• Tuberculosis
• Neumonía

ESPUTO: Investigación de Tuberculosis

• Recolección en envase estéril o no estéril
• Esputo, no saliva
• Preferiblemente en la mañana al levantarse.
• Antes del cepillado de dientes
• En un lugar ventilado

ESPUTO: Investigación de neumonía

• Recolección en envase estéril
• Esputo, no saliva
• Cepillado dental
• Enjuague bucal

​

ESPUTO

Técnicas opcionales

• Drenaje postural
• Aspiración con catéter
• Inducción por nebulización con sol. fisiológica
• Aspiración transtraqueal percutánea

SOLUCIONES A ALGUNOS PROBLEMAS

LIQUIDOS ORGÁNICOS�Pleural, ascítico, pericárdico, articular

Muestras nocturnas o fin de semana:

• Inocular 10 ml en frasco de hemocultivo.
• Colocar en estufa a 35 – 37º C

SECRECIÓN PURULENTA TOMADA CON HISOPO

Muestras nocturnas

• Colocar hisopo en medio de transporte.
• Colocar a tempertura ambiente

No hacerlo fines de semana

CRITERIOS DE RECHAZO

CRITERIOS DE RECHAZO

• Petitorio incompleto
• Discrepancia entre identificación del paciente, solicitud del examen y tipo de muestra.
• No indica tipo de muestra y/o exámen deseado.
• Muestra identificada solo por sitio anatómico (brazo, pierna)
• Saliva (cultivo de esputo).

CRITERIOS DE RECHAZO

• Gram: exudado faríngeo, heces, sec. Nasal, punta de cateter, y muestras en medio de transporte (cary-blair) y no ssf..
• Orinas en envases no adecuados, y con mas de 1 hora a temperatura ambiente.
• Recipientes inadecuados (esputo para cultivo en envases de heces o envases de BK)

CRITERIOS DE RECHAZO

• Sondas de Foley.
• LCR en tubos con tapa de algodón.
• Muestras derramadas.
• Cultivos para anaerobios en medios convencionales.

​

“TODA MUESTRA QUE NO ESTÉ BIEN IDENTIFICADA Y SIN INFORMACIÓN CLÍNICA”

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La calidad del trabajo de laboratorio no puede ser superior a la calidad de la muestra recibida